因并告知送检者（或送检科室）重新采样检验。

五、粪便标本采集运输作业指导书

1.目的：采集粪便标本以做粪便常规和其他检验。

2.适用范围：适用于医学检验科做粪便常规和其他检验项目所需粪便标本的采集。 3.物品准备：专用一次性杯或试管、编号笔。 4.检验申请项目要求：

4.1检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。 4.2急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。 5.标本采集步骤：

5.1护士核对医嘱后，打印条形码；向受检者讲解标本留取方法及注意事项，以取得合作。门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码。 5.2发一次性杯或试管一个给受检者，嘱受检者留取粪便标本一小时内送检。

5.3受检者按要求自己用一次性杯或试管留取粪便标本，把标本放在指定存放区域。 6.标本运输步骤：

6.1标本采集后应立即送检，住院患者检验标本必须在上午11：00 之前送达检验科， 特殊新入院患者酌情延迟送检，急诊标本随留随送。如受各种条件限制，不能立即送检， 应将标本放置于阴凉、稳妥处，但从留取至送检时间不宜超过2小时。 6.2标本运输前进行标本信息登记，以便实验室工作人员核对接收。

6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、 患者或环境的方式运送到实验室。

6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。

7.注意事项：

7.1采集粪便标本的方法因检查目的不同而有差别，粪便常规检验留取新鲜的自然排出 的粪便3～5g（指头大小），并注意选取粪便的病理成份，如粘液、血液（红色或黑色部 份）；若无病理成分，可各部位取材。 7.2取标本时应注意粪便的颜色与外观，如有异常应向医生叙述。采取标本后及时送检， 否则可因PH 及消化酶等影响，而使粪便中细胞成分破坏分解。

7.3不应留取尿壶或便盆中的粪便标本。若标本中混入尿液，可导致某些项目检测结果 出现错误。粪便标本中也不可混入植物、泥土、污水等异物，易混淆实验结果。不应该 从卫生纸或衣裤、纸尿裤等物品上留取标本，不能用棉签有棉絮端挑取标本。 7.4粪便标本应不污染容器外表，应避免使用能吸收水份的容器。

7.5细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其它化学药品。 7.6稳血（或称潜血，OB）试验，应嘱患者收集标本前3天禁食动物性食物。服用铁剂、 铋剂、动物血液及绿叶蔬菜等可影响隐血测定应注意避免。

7.7隐血实验标本选取外表及内层粪便，连续检查3 天，以免误诊，因为口腔黏膜及牙 龈出血都可造成稳血试验阳性。

7.8无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便。灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴 等而不适于作检查标本。

8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原 因并告知送检者（或送检科室）重新采样检验。

六、前列腺液采集运输作业指导书

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1.目的：留取前列腺液标本以做各项检验。

2.适用范围：适用于检验科做前列腺液分析各项目所需标本的采集。 3.物品准备：洁净玻片或试管。 4.检验申请项目要求：

检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。 5.标本采集步骤：

5.1采样者查对检验申请项目、姓名，向受检者解释操作目的、注意事项，以取得合作。 5.2由临床医生采用前列腺按摩术，采集前列腺液于清洁玻片上（或容器内），第一滴弃 去，立即送检。

5.3门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码；

住院患者在送检标本时需附带标本信息条形码，条形码要打印清楚，能够通过扫描仪扫 描接收。

6.标本运输步骤：

6.1标本应立即送检，涂片标本避免干燥。

6.2标本运输前进行标本信息登记以便检验科工作人员核对接收。

6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、 患者或环境的方式运送到实验室。

6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。 7.注意事项：

7.1前列腺液标本应由临床医师进行前列腺按摩术采集，可直接滴在玻片上；若按摩不 出前列腺液，可检查按摩后的尿液。做培养用的标本应用无菌管采集。 7.2疑为前列腺结核、脓肿或肿瘤的患者禁忌前列腺按摩。

7.3一次按摩失败或检查结果阴性，而明确有临床指征者，可隔3～5 天后重新复查。 8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原 因并告知送检者，必要时重新采样检验。

七、精液采集运输作业指导书

1.目的：留取精液标本以做各项检验。

2.适用范围：适用于检验科做精液分析各项目所需精液标本的采集。 3.物品准备：专用洁净一次性尿杯。

4.检验申请项目要求：检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。 5.采集操作步骤：

5.1查对检验申请项目、姓名，向受检者解释操作目的、注意事项，以取得合作。 5.2发一次性尿杯一个给受检者，自己采用手淫法取精液盛于尿杯内，送交检验室待检，样本送检时需附带样本信息条形码，条形码要打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收；门诊患者需拿项目指引单到检验科一楼条形码打印处，打印标本信息条形码。 6.标本运输步骤：

6.1留取标本后应立即送检，最迟存放不能超过半小时。如天气寒冷，应使标本保存于接近体温条件下送检。

6.2标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。

6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、 患者或环境的方式运送到实验室。

6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。

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7.注意事项

7.1精液采集最好在实验室附近，室温应控制在20～35℃，30分钟内送检，采集标本前 禁欲3～7 天，采集精液前排净尿液。

7.2可用手淫法或其它方法，将一次射出的全部精液直接排入洁净、干燥的容器内。不 能使用避孕套采集精液标本，避免避孕套中含有的某些杀死或抑精子活性的物质会影响 检验结果。

7.3不能采用中断性交的方式采集精液标本，避免阴道分泌物影响检验结果。 7.4取出的精液必须全部盛于干净的容器内送检，以便准确报告精液量。 7.5因精子生成日间变动较大，不能仅凭一次检查结果做诊断。一般应间隔1～2周检查 一次，连续检查2～3 次。

8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原 因并告知送检者，必要时重新采样检验。

八、脑脊液标本采集运输作业指导书

1.目的：抽取脑脊液标本以做常规、生化、微生物学等项目检验。

2.适用范围：适用于本科做常规、生化、微生物检验的脑脊液标本采集。 3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱布、无菌棉签、骨髓穿刺针、手消毒液、利器盒、手套、口罩、载玻片，试管及无菌管等。

4.检验申请项目要求：

4.1检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。 4.2急诊检验申请需选带有“ST”标志的项目。

5.标本采集步骤： 5.1部位：

5.1.1以髂后上棘连线与后正中线的交点为穿刺点，相当于第3～4 腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。 5.2方法：

5.2.1患者侧卧于硬板床，背部与床面垂直，两手抱膝紧贴腹部，头向前胸屈曲，使躯 干呈弓形，脊柱尽量后凸以增宽脊椎间隙。

5.2.2常规消毒，戴无菌手套，覆盖无菌洞巾，用2％利多卡因自皮肤到椎间韧带作局部麻醉。

5.2.3术者用左手固定穿刺皮肤，右手持穿刺针以垂直背部方向缓缓刺入，针尖稍斜向 头部，成人进针深度约4～6 厘米，儿童约2～4 厘米。当针头穿过韧带与硬脑膜时，有阻力突然消失落空感，此时可将针芯慢慢抽出，即可见脑脊液流出。

5.2.4放液前先接上测压管测量压力，正常侧卧位脑脊液压力为70～180mmH2O 或40～50滴每分钟。可作Queckenstedt 试验，了解蛛网膜下腔有无阻塞。即在测初压后，由助手先压迫一侧颈静脉约10 秒，再压另一侧，最后同时压双侧颈静脉。正常压迫静脉后，脑脊液压力立即迅速升高一倍左右，解除压迫后10～20 秒，迅速降至原来水平，称为梗阻试验阴性，示蛛网膜下腔通畅。若压迫颈静脉后，不能使脑脊液压力升高，则为梗阻试验阳性，示蛛网膜下腔完全阻塞。若施压后压力缓慢上升，放松后又缓慢下降，示有不完全阻塞。颅内压增高者，禁作此试验。

5.2.5 撤去测压管，收集脑脊液2～5ml 送检；脑脊液应采集三管，第一管用于细菌培养

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检查（无菌操作），第二管用于常规检查，第三管用于生化检查。

5.2.6术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，胶布固定。 5.2.7去枕平卧4～6 小时，以免引起术后低颅压头痛。 6.标本运输步骤：

6.1脑脊液标本采集后应立即送检，在标本管（瓶）上贴好标本信息条形码，条形码标 本类型和实际送检标本类型必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪 扫描接收。

6.2标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。

6.3将登记过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、 患者或环境的方式运送到实验室。

6.4标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。 7.注意事项

7.1脑脊液标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名和检验项目， 明确标本要求。

7.2严格掌握禁忌症，凡疑有颅内压升高者必须先作眼底检查，如有明显视神经乳头水 肿或有脑疝先兆者，禁忌穿刺。凡患者处于休克、衰竭或濒危状态以及局部皮肤有炎症， 颅后窝有占位性病变者均列为禁忌。

7.3穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常时，应立即停止操作，并作出相应处理。 7.4鞘内给药时，应先放出等量脑脊液，然后再等量置换性药液注入。 7.5采集标本时应注意避免混入血液，采集后立即送检(否则可出现细胞变性，标本凝集， 细菌溶解)，化学检查标本宜用肝素抗凝。第二份作常规检查应避免凝固，必要时可用含有EDTA-K2 抗凝剂的试管收集。如做细菌培养，应在用药前采集无菌标本。

7.6收集标本后，必须立即送检。久置可致细胞破坏，葡萄糖分解，病原菌破坏或溶解。 细胞计数标本应注意防止凝集。

7.7用于微生物检验的标本应注意保温，不可置冰箱保存。

8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原 因并告知送检科室，必要时重新采样检验。

九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书

1.目的：抽取浆膜腔积液（胸水）标本以做各项检验。

2.适用范围：适用于本科做常规、生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（胸水） 采集。

3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱 布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、手消毒液、利器盒、样本瓶、无菌试管、 编号笔、手套、口罩。 4.检验申请项目要求：

检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。 5.标本采集步骤： 5.1部位：

在胸部叩诊实音最明显的部位，一般取肩胛线或腋后线第7～8 肋间，有时也可取腋 中线第6～7 肋间或腋前线第5 肋间。 5.2方法：

5.2.1取坐位，两前臂置于椅背上，前额伏于前臂上；不能起床者可取半卧位，前臂上

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举抱于枕部。

5.2.2常规消毒，拿无菌手套，覆盖无菌洞巾。

5.2.3用2﹪利多卡因在下一肋骨上缘的穿刺点自皮肤至胸膜壁层进行局部浸润麻醉。 5.2.4术者以左手食指和中指固定穿刺部位皮肤，右手将穿刺针的三通活栓转到与胸腔 关闭处，再将穿刺针在麻醉处缓缓刺入，当针锋抵挡感突然消失时，将三通活栓转至与 胸腔相通，进行抽液。注射器抽满后，转动三通活栓使其与外界相通，排出液体。如用 较粗的长穿刺针代替胸腔穿刺针时，先将针座后连续的橡皮管用血管钳夹住，然后进行 穿刺，进入胸腔后再接上注射器，松开止血钳，抽吸液体，抽满后再次夹住橡皮管，取 下注射器，将液体注入弯盘，计量及送检, 作培养时应用无菌操作法留标本。

5.2.5 抽液结束后拔出穿刺针，覆盖无菌纱布，稍用力压迫片刻，用胶布固定后嘱患者 静卧。

6.标本运输步骤：

6.1标本应立即送检，有条件的可低温条件2～8℃运输，微生物检验标本不应置于冰箱 内，以免细菌死亡而使培养阴性。

6.2送检标本应在标本管上贴好标本信息条形码，条形码标本类型和实际送检标本类型 必须一致；条形码要粘贴正确，打印清楚，能够通过扫描仪扫描接收。 6.3标本运输前进行标本信息登记，以便检验科工作人员核对接收。

6.4将扫描过的标本置于安全、防漏的容器中运输，所有标本应以防止污染工作人员、 患者或环境的方式运送到实验室。

6.5标本运送到实验室后，由实验室工作人员对标本进行核对接收。 7.注意事项：

7.1浆膜腔积液（胸水）标本由临床医师行无菌穿刺术采集，标本采集前应核对好姓名 和检验项目，明确标本要求。 7.2手术前向患者说明穿刺目的，消除顾虑，精神紧张者，可于术前半小时给地西洋10mg， 或可待因30mg以镇静止痛。

7.3术中密切观察患者反应，如有头晕、面色苍白、出汗、心悸、胸部压迫感等反应， 或出现连续性咳嗽、气促等现象，应立即停止抽液，并皮下注射0.1％肾上腺素0.3～0.5ml或进行其他对症处理。

7.4一次抽液不应过多，诊断抽液50～100ml 即可；减压抽液，首次不超过600ml，以后每次不超过1000ml；如为脓胸，每次尽量抽尽。 7.5严格无菌操作，操作中防止空气进入胸腔。

7.6收集标本后，为防止细胞变性出现凝固或细菌破坏溶解等，必须立即送检。

8.其它：如分析失败，将对同一原始样本再次进行检验。如仍不能发出报告者，分析原 因并告知送检科室，必要时重新采样检验。

十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书

1.目的：抽取浆膜腔积液（腹水）标本以做各项检验。

2.适用范围：适用于本科做常规、生化、免疫、微生物等项目所需的浆膜腔积液（腹水） 采集。

3.物品准备：一次性垫巾、复合碘消毒液、2﹪利多卡因、血管钳、无菌洞巾、无菌纱 布、无菌棉签、胸腔穿刺针、一次性注射器、手消毒液、利器盒、样本瓶、无菌试管、 编号笔、手套、口罩。

4.检验申请项目要求：检验申请项目必须按检验系统内可选的项目或组合进行申请。

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