骨髓增生异常综合征诊断与治疗中国专家共识（2014 年版）

2014-12-26 09:58来源：丁香园作者：中华医学会血液学分会 字体大小 -|+

骨髓增生异常综合征 (myelodysplastic syndromes，MDS) 是起源于造血干细胞的一组异质性髓系克隆性疾病，特点是髓系细胞发育异常，表现为无效造血、难治性血细胞减少，高风险向急性髓系白血病 (AML) 转化。

为进一步提高我国 MDS 的诊治水平，中华医学会血液学分会在《骨髓增生异常综合征诊断与治疗专家共识（2012）》的基础上，结合近年来 MDS 领域的最新临床研究成果和国内的实际情况，达成以下共识。 一、诊断

1．诊断标准：MDS 诊断需满足两个必要条件和一个确定标准。

(1) 必要条件：①持续一系或多系血细胞减少：红细胞 (HGB<110 g/L)、中性粒细胞 [中性粒细胞绝对计数 (ANC)<1.5×109/L]、血小板 (PLT<100×109/L)；②排除其他可以导致血细胞减少和发育异常的造血及非造血系统疾患。

(2) 确定标准：①发育异常：骨髓涂片中红细胞系、粒细胞系、巨核细胞系中发育异常细胞的比例≥10%；②环状铁粒幼红细胞占有核红细胞比例≥15%；③原始细胞：骨髓涂片中达 5%～19%；④MDS 常见染色体异常。

(3) 辅助标准：①流式细胞术检查结果显示骨髓细胞表型异常，提示红细胞系和（或）髓系存在单克隆细胞群；②遗传学分析提示存在明确的单克隆细胞群；③骨髓和（或）外周血中祖细胞的 CFU（±集簇）形成显著和持久减少。

当患者符合必要条件、未达确定标准（不典型的染色体异常、发育异常细胞 < 10%、原始细胞比例≤4% 等）、存在输血依赖的大细胞性贫血等常见 MDS 临床表现、临床表现高度疑似 MDS 时，应进行 MDS 辅助诊断标准的检测。符合者基本为伴有骨髓功能衰竭的克隆性髓系疾病，此类患者诊断为高度疑似 MDS。

若辅助检测未能够进行，或结果呈阴性，则对患者进行随访，或暂时归为意义未明的特发性血细胞减少症（idiopathic cytopenia of undetermined significance,ICUS)。部分 ICUS 可逐渐发展为典型 MDS，因此应严密监测，随访过程中如患者出现典型的细胞遗传学异常，即使仍然缺乏原始细胞增加及细胞发育异常的表现，应诊断为 MDS。 2．MDS 的鉴别诊断：MDS 的诊断依赖于骨髓细胞分析中所发现细胞发育异常的形态学表现、原始细胞比例升高和细胞遗传学异常。MDS 的诊断一定程度上仍然是排除性诊断，应首先排除其他可能导致反应性血细胞减少或细胞发育异常的因素或疾病，常见需要与 MDS 鉴别的因素或疾病包括： ①维生素 B12 和叶酸缺乏；

②接受细胞毒性药物、细胞因子治疗或接触有血液毒性的化学制品或生物制剂等； ③慢性病性贫血（感染、非感染性炎症或肿瘤）、慢性肝病、HIV 感染； ④自身免疫性血细胞减少、甲状腺功能减退或其他甲状腺疾病； ⑤重金属中毒、过度饮酒；

⑥其他可累及造血干细胞的疾病，如再生障碍性贫血、原发性骨髓纤维化（尤其需要与伴有纤维化的 MDS 相鉴别）、大颗粒淋巴细胞白血病 (LGL)、阵发性睡眠性血红蛋白尿症(PNH)、急性白血病[尤其是伴有血细胞发育异常的形态学特点的患者或急性髓系白血病(AML)-M7] 及其他先天性或遗传性血液病（如先天性红细胞生成异常性贫血、遗传性铁粒

幼细胞性贫血、先天性角化不良、范可尼贫血、先天性中性粒细胞减少症和先天性纯红细胞再生障碍性贫血等）。

3．MDS 的诊断方法：MDS 诊断依赖于多种实验室检测技术的综合使用，其中骨髓细胞形态学和细胞遗传学检测技术是 MDS 诊断的核心。MDS 的主要诊断方法见表 1。

4．细胞形态学检测：MDS 患者外周血和骨髓的形态学异常分为两类：原始细胞比例增高和细胞发育异常。其中原始细胞可分为 2 型：I 型为无嗜天青颗粒的原始细胞；Ⅱ型为含有嗜天青颗粒但未出现核旁高尔基区的原始细胞，出现核旁高尔基区者则判断为早幼粒细胞。典型的 MDS 患者，发育异常细胞占相应系列细胞的比例≥10%。拟诊 MDS 患者均应进行骨髓铁染色计数环形铁粒幼红细胞，其定义为幼红细胞胞质内蓝色颗粒在 5 颗以上且围绕核周 1/3 以上者。

所有怀疑为 MDS 的患者均应接受骨髓病理活检，通常在髂后上棘取骨髓组织，长度不少于 1.5 cm。骨髓病理活检有助于排除其他可能导致血细胞减少的因素或疾病，并提供患者骨髓内细胞增生程度、巨核细胞数量、原始细胞群体、骨髓纤维化及肿瘤骨髓转移等重要信息。怀疑为 MDS 的患者建议进行 Gomori 银染色和原位免疫组化 (immunohisto-chemical，IHC)，常用的检测标志包括 CD34、MPO、GPA、CD61、CD42、CD68、CD20 和 CD3.

5．细胞遗传学检测：所有怀疑 MDS 的患者均应进行染色体核型检测，通常需分析≥20 个骨髓细胞的中期分裂象，并按照《人类细胞遗传学国际命名体制 (ISCN)2013》进行核型描述。40%～60% 的 MDS 患者具有非随机的染色体异常，其中以 - 5/5 q-、- 7/7q-、+8、20q- 和 -Y 最为多见。

MDS 患者常见的染色体异常中，部分异常具有特异性诊断价值，包括 - 7/7q-、- 5/5q-、i(17q)/t (17p)、- 13/13q-、llq-、12p-/t (12p)、9q-、idic (X) (q13)、t(11;16) (q23;p13.3)、t (3; 21) (q26.2; q22.1)、t(1;3)(p36.3; q21.2)、t(2; 11)(p21;q23)、inv (3) (q21;q26.2) 和 t(6;9) (p23;q34)。

而 +8、20q- 和 -Y 亦可见于再生障碍性贫血及其他非克隆性血细胞减少疾病，部分伴有单纯 +8、20q- 或 -Y 的患者免疫抑制治疗有效，且长期随访未出现提示 MDS 的形态学依据。形态学未达到标准（一系或多系细胞发育异常比例 <10%）、但同时伴有持续性血细胞减少的患者，如检出具有 MDS 诊断价值的细胞遗传学异常，应诊断为 MDS 不能分类 (MDS-U)。

应用针对 MDS 常见异常的组套探针进行 FISH 检测，可提高部分 MDS 患者细胞遗传学异常检出率。因此，对疑似 MDS 者，骨髓干抽、无中期分裂相、分裂相质量差或可分析中期分裂相 <20 个时，可进行 FISH 检测，通常探针应包括：Sq31、CEP7、7q31、CEP8、20q、CEPY 和 p53。

6．流式细胞术检测：目前尚未发现 MDS 特异性的抗原标志或标志组合，但流式细胞术对于低危 MDS 与非克隆性血细胞减少症的鉴别诊断有应用价值。对于无典型形态、细胞遗传学证据、无法确诊 MDS 的患者，流式细胞术检测有≥3 个异常抗原标志，提示 MDS 的可能。

7．分子遗传学检测：单核苷酸多态性微阵列 (SNP-array) 等基因芯片技术可以在多数 MDS 患者中检测出 DNA 拷贝数异常和单亲二倍体，从而进一步提高 MDS 患者细胞遗传学异常的检出率。在有条件的单位，SNP-array 可作为常规核型分析的有益补充。 随着基因芯片、第二代基因测序等高通量技术的广泛应用，多数 MDS 患者中可检出体细胞性基因突变，常见突变包括 TET2、RUNX1、ASXL1、DNMT3A、EZH2、N-RAS/K-RAS、SF381 等。对常见基因突变进行检测对于 MDS 的诊断有潜在的应用价值。 二、分型建议

1．FAB 分型：1982 年 FAB 协作组提出以形态学为基础的 MDS 分型体系（表 2），主要根据 MDS 患者外周血和骨髓细胞发育异常的特征，特别是原始细胞比例、环形铁粒幼细胞比例、Auer 小体及外周血单核细胞数量，将 MDS 分为 5 型：难治性贫血 (refractory anemia，RA)、环形铁粒幼红细胞性难治性贫血（RA with ringed sideroblasts，RAS）、难治性贫血伴原始细胞增多 (RA with excess blasts，RAEB)、难治性贫血伴原始细胞增多转化型 (RAEB in transformation，RAEB-t)、慢性粒一单核细胞白血病 (chronic myelomonocytic leukemia，CMML)。

2．WHO (2008) 分型：1997 年 WHO 开始修订 MDS 的 FAB 分型方案。2008 年 WHO 推出了修订的 MDS 分型方案 (WH0 2008)（表 3）。目前，WH0 2008 分型已被广泛接受，MDS 患者均应按照 WH0 2008 分型方案进行诊断分类。

与 FAB 分型相比，主要包括以下变化：①将诊断 AML 的骨髓原始细胞比例阈值由 30% 降至 20%，将 RAEB-t 亚型并入 AML；②增加了难治性血细胞减少伴单系发育异常的亚型 (RCUD)；③将 CMML 划分入 1 个新的髓系肿瘤类别 MDS/ 骨髓增殖性肿瘤(MPN)；