心血管活动调节及药物的影响
【目的】观察家兔颈迷走神经、交感神经和降压神经以及药物对心脏和血管活动的影响。
【动物】家兔。
【药品与器材】哺乳类手术器械一套，保护电极，压力换能器，塑料三通，气管插管，动脉夹，10ml注射器，卡介苗注射器，头皮针，SMUP－PC型生物信号处理系统，1.5%戊巴比妥钠溶液，0.1％肝素溶液，1:10,000肾上腺素溶液，生理盐水。
【实验步骤】
1． 准备检压系统 通过三通开关向压力换能器内注满生理盐水，并向动脉插管内灌满0.1％肝素溶液，务必驱尽管道系统内的空气，然后关上三通开关备用。
2． 称重、麻醉与固定 取家兔一只，称重后从兔耳缘静脉缓慢注射1.5%戊巴比妥钠溶液（30mg/kg）进行麻醉，然后将动物仰卧位固定在手术台上（室温较低时可打开手术台底面电灯保温）。
3． 手术 用粗剪刀剪去颈部手术部位兔毛，在颈部沿正中线切开皮肤5-7cm，分离皮下组织，于正中线分开肌肉，暴露气管，在甲状软骨下约1cm处剪一倒“T”型切口，插入气管插管，并用线扎紧以防滑脱。将切口边缘的皮肤及其下方的肌肉组织向外侧拉开，即可见在气管两纵行的左、右颈总动脉，颈迷走神经。交感神经和降压神经与颈总动脉伴行，行走于同一颈总动脉鞘内。仔细辨认三条神经，颈迷走神经最粗，颈交感神经次之，降压神经最细，且常与颈交感神经紧贴在一起，（见图3-3-1）可用玻璃针先分离右侧降压神经，然后分离右侧颈迷走神经、交感神经和颈总动脉。每根神经、血管分离出3－4cm，并在各神经、血管下穿一条不同颜色的丝线备用。
交感神经气管降压神经迷走神经颈总动脉
图3-3-1 兔颈部神经、血管解剖位置示意
4． 动脉插管 分离左侧颈总动脉，尽可能向头端游离，穿线并结扎头端，用动脉夹夹住其近心端，结扎处与动脉夹夹闭间的颈总动脉长度约需3cm。在血管下穿线备用。用眼科剪在头端结扎线下方0.5cm处的动脉壁上作一斜切口，切口约为管径的一半，然后将准备好的动脉插管由切口处向心脏方向插入动脉内。用已穿好的线扎紧插入血管的动脉插管，并用同一线在插管线上方约2cm处再打结固定，以防插管滑脱。细心剪断该动脉在头端结扎处与动脉插管插入处之间部分，以防该侧颈动脉窦过分牵拉。使动脉插管与动脉保持在同一直线上，然后用胶布将动脉插管固定在手术台上。放开颈总动脉上动脉夹，同时旋转三通开关旋钮，使动脉插管与压力换能器之间相通。
5． 联接实验装置，信号由通道1输入。调节好压力放大器的位移和增益，D/A-1或D/A-2的输出接刺激电极，将幅度电位器顺时针方向调到最大（5V）。
6． 运行MFLab200.EXE。选择《心血管活动调节及药物的影响》，单击“确定”。
在菜单“功能选择”项下选择“采集信号”或直接单击工具条上的“采集信号”图标。启动采样后，屏幕中间为信号显示窗口。屏幕右边为实验控制面板。
通过实验控制面板设置实验参数和控制实验进程。X轴扫描时间根据需要设定，“刺激频率”取20Hz，“刺激时间” 根据需要设定，“脉冲宽度”取0.1ms。“脉冲1强度”取0.1~1V。
血压换能器通大气，按动压力放大器定标按钮，单击“定标”按钮，稍后程序显示一个对话框，在对话框内选择“双值定标”，按“确定”定标完毕。接通血压，调节周期检测阈值线，屏幕下方显示收缩压、舒张压、平均压和心率。
单击“储存”按钮，程序开始储存信号（储存区上方的长条指示当前储存区中数据的长度）。再次单击“储存”按钮。储存终止。
单击“标记”按钮，曲线上方显示一箭头，用于表示某一处理。 单击“刺激”按钮，D/A口输出刺激脉冲。
单击“结束”按钮，退出“采集信号”功能，进入“浏览和测量”功能。
程序以500个数据作为一个记录进行浏览和测量。窗口下方的滑动条用来选取记录。拖动滑动块可指向任意一个记录；单击滑动条两端的箭头左移或右移一个记录；单击滑动块两旁的空白处可向前或向后搜索临近的标记，并跳转到有标记的记录，如搜索不到标记，则左移或右移一个记录。
单击“增大X轴时间”和“减小X轴时间”按钮，可压缩和展宽数据。 7．观察神经对血压和心率变化的调节：
（1）用动脉夹夹闭右侧颈总动脉，阻断血流15s，观察血压和心率的变化。 （2）刺激右颈迷走神经，观察血压和心率的变化。
8．观察药物对血压和心率变化的作用，按以下顺序从耳缘静脉给药： （1）生理盐水 0.1ml/kg。
（2）肾上腺素 1:10,000，0.1ml/kg。
呼吸调节及药物影响
【目的】观察吸入气中PO2降低、PCO2升高、血液中pH值降低等化学性刺激，支气管和细支气管的机械性牵张刺激以及呼吸兴奋、抑制药物和其他各种刺激对家兔呼吸运动的影响。
【动物】家兔
【药品与器材】哺乳类动物手术器械，不锈钢插入式引导电极，SMUP－PC型生物信号处理系统，1.5%戊巴比妥钠溶液，0.l％肝素溶液。
【实验步骤】
1．称重、麻醉、固定及气管插管。
2．膈肌暴露手术：剪去胸腹部交界处手术部位兔毛，摸到剑突后，在其表面沿正中线纵行切开皮肤2～3cm（切口不宜过大，以免内脏涌出），用止血钳分离皮下组织及腹壁肌，暴露剑突。将剑突上方狭窄部软骨剪一缺口，并将剑突向上翻起缝合于皮肤上，即暴露出剑突背侧的膈肌。将两根不锈钢引导电极平行的插入暴露的膈肌片内，实验过程中电极不宜反复插拔，以免出血，电极需固定良好勿使其摆动。动物妥善接地。
3．联接实验装置，信号由通道一输入。生物电放大器的时间常数设置为0.02s或 0.002s，高频滤波置为OFF。
4. 运行MFLab200.EXE。选择《呼吸调节及药物影响》，单击“确定”。
在菜单“功能选择”项下选择“采集信号”或直接单击工具条上的“采集信号”图标。启动采样后，屏幕中间为信号显示窗口。屏幕右边为实验控制面板。
通过实验控制面板设置实验参数和控制实验进程。X轴扫描时间根据需要设定。
根据屏幕上显示的信号，适当调节生物电放大器的位移和增益。单击“阈值??”按钮，使阈值线刚好落在噪声之上，程序以此水平线作参考，将膈肌放电有效检出（隔肌放电触发积分原理见图3-5-2）。阈值线放置一定要适宜，否则积分无法出现。积分曲线的幅度可用相应按钮放大或缩小。如发现积分曲线与原始信号不同步，可调用菜单“文件/改变实验设置”功能，适当加大“等待时间”。
调试好信号后，调用菜单“文件/改变实验设置”功能，在相应对话框中输入放大器1的增益。
图膈肌放电触发积分原理
“储存”、“标记”、“浏览和测量”、“增大X轴时间”、“减小X轴时间”和“打印”等操作同实验三。
5．肺牵张反射
于气管插管的两个外侧管上分别接上约5cm长的橡皮管一段，其中一侧借细橡皮管连接50ml注射器，另一侧游离，为以后夹闭备用。实验前先记录一段对照曲线，然后看准吸气相之末，先将气管插管的游离端夹闭，随即将注射器内事先抽好的空气(约20-30ml）迅速注入肺内，并使肺维持在扩张状态约5s，观察并记录膈肌放电变化。然后撤除夹闭，观察膈肌放电恢复过程。休息片刻，待膈肌放电平稳后，于呼气相之末，再夹闭游离端，随即将注射器从肺内迅速抽气（约20~30ml）使肺维持在萎陷状态约5s，观察并记录膈肌放电变化。然后撤除夹闭。以上观察可反复进行几次。
【注意事项】
1．暴露膈肌时，切口不可太上，勿损伤胸壁，插肌电引导电极时，不可插向深面，以防气胸。引导电极应尽量一次插成，以免反复插造成血肿和肌损伤而影响肌电引导。
2．抽气和打气时要注意充分配合。