Western-Blot 操作流程及注意事项
Western操作步骤 （一）蛋白样品制备
（1）单层贴壁细胞总蛋白的提取：
1. 倒掉培养液，并将瓶倒扣在吸水纸上使吸水纸吸干培养液（或将瓶直立放置一会儿使残余培养液流到瓶底然后再用移液器将其吸走）。
2. 每瓶细胞加3ml 4℃预冷的PBS（0.01M pH7.2~7.3）。平放轻轻摇动1min 洗涤细胞，然后弃去洗液。重复以上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。将PBS 弃净后把培养瓶置于冰上。
3. 按1ml 裂解液加10 μl PMSF（100mM），摇匀置于冰上。（PMSF要摇匀至无结晶时才可与裂解液混合）
4. 每瓶细胞加400 μl含PMSF的裂解液，冰上裂解30min，为使细胞充分裂解培养瓶要经常来回摇动。 5. 裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧（动作要快），然后用枪将细胞碎片和裂解液移至1.5ml 离心管中。（整个操作尽量在冰上进行）
6. 于4℃下12000rpm 离心5min。（提前开离心机预冷）
7. 将离心后的上清分装转移倒0.5min 的离心管中放于-20℃保存。
（个人感觉上述方法可操作性有待加强，细胞中蛋白本来就很少，一瓶50ml的细胞有时按照实验要求只能加100~200μl 的裂解液，按照上述操作，直接用200μl 裂解液进行裂解，根本就不够瓶壁上沾的。本人是先用预冷的PBS（一般数毫升）加入后，用细胞刮刮下细胞，转移至试管中，如果数瓶细胞是收集同一蛋白的，可以放在同一试管，离心后再将蛋白转移到EP管中，这样可操作性就比较强） （2）组织中总蛋白的提取：
1. 将少量组织块置于1~2ml 匀浆器中球状部位，用干净的剪刀将组织块尽量剪碎。 2. 加400 μl 单去污剂裂解液裂（含PMSF）于匀浆器中进行匀浆。然后置于冰上。 3. 几分钟后再碾一会儿再置于冰上，要重复碾几次使组织尽量碾碎。
4. 裂解30 min 后，即可用移液器将裂解液移至1.5ml 离心管中，然后在4℃下12000rpm 离心5min，取上清分装于0.5ml 离心管中并置于-20℃保存。 （3）加药物处理的贴壁细胞总蛋白的提取：
由于受药物的影响，一些细胞脱落下来，所以除按（一）操作外还应收集培养液中的细胞。以下是培养液中细胞总蛋白的提取：
1. 将培养液倒至15ml 离心管中，于2500rpm 离心5min。 2. 弃上清，加入4ml PBS并用枪轻吹打洗涤，然后2500rpm离心5min。弃上清后PBS 重复洗涤一次。 3. 用枪吸干上清后，加100 μl 裂解液（含PMSF）冰上裂解30min，裂解过程中 要经常弹一弹以使细胞充分裂解。
4. 将裂解液与培养瓶中裂解液混在一起4℃、12000rpm 离心5min，取上清分装于0.5ml 离心管中并置于-20℃保存。
（二）蛋白含量的测定 （1）制作标准曲线
1. 从-20℃取出1mg/ml BSA，室温融化后，备用。
2. 取18 个1.5ml 离心管，3 个一组，分别标记为0μg，2.5μg，5.0μg ，10.0μg ，20.0μg ，40.0μg。 3. 按下表在各管中加入各种试剂。 1mg/ml BSA 0.15mol/L NaCl 0μg － 100μl 2.5μg 2.5μl 97.5μl 1ml 5.0μg 5.0μl 95.0μl 1ml 10.0μg 10.0μl 90.0μl 1ml 20.0μg 20.0μl 80.0μl 1ml 40.0μg 40.0μl 60.0μl 1ml G250 考马斯亮蓝溶液 1ml 4. 混匀后，室温放置 2min。在生物分光光度计上比色分析。 （2）检测样品蛋白含量
1. 取足量的1.5ml 离心管，每管加入4℃储存的考马斯亮蓝1ml。室温放置30min 后即可用于测蛋白。 2. 取一管考马斯亮蓝加0.15mol/L NaCl 溶液100 μl，混匀放置2 分钟可做为空白样品，将空白倒入比色杯中在做好标准曲线的程序下按blank 测空白样品。
3. 弃空白样品，用无水乙醇清洗比色杯2 次（每次0.5ml），再用无菌水洗一次。
4. 取一管考马斯亮蓝加95 μl 0.15mol/L NaCl溶液和5μl 待测蛋白样品， 混匀后静置2min，倒入扣干的比色杯中按sample 键测样品。
注意：每测一个样品都要将比色杯用无水乙醇洗2 次，无菌水洗一次。可同时混合好多个样品再一起测，这样对测定大量的蛋白样品可节省很多时间。测得的结果是5 μl样品含的蛋白量。 （上述方法只是一家之言，可以自我变通，本人就不是按照上述方法进行的） （三）SDS-PAGE 电泳 （1）清洗玻璃板：
一只手扣紧玻璃板，另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。两面都擦洗过后用自来水冲，再用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干。 （2）灌胶与上样
1. 玻璃板对齐后放入夹中卡紧。然后垂直卡在架子上准备灌胶。（可以用1% 琼脂糖在垂直电泳槽的左、右和下部封边，五分钟后重复一次，这样可以保证基本不漏胶） 2. 按前面方法配10％分离胶，加入TEMED 后立即摇匀即可灌胶。灌胶时，可用10ml 枪吸取5ml 胶沿玻璃放出，待胶面升到绿带中间线高度时即可。然后胶上加一层水，液封后的胶凝的更快。（灌胶时开始可快一些，胶面快到所需高度时要放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下，这样胶中才不会有气泡。加水液封时要慢，否则胶会被冲变型。）
3. 当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝了。再等3min 使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。
4. 按前面方法配4%的浓缩胶，加入TEMED 后立即摇匀即可灌胶。将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。插梳子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积会收缩减小，从而使加样孔的上样体积减小，所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶（其实说经常有点过了，补1~2 次就行了，不补胶问题也不大）。待到浓缩胶凝固后，两手分别捏住梳子的两边竖直向上轻轻将其拔出。
5. 用水冲洗一下浓缩胶，将其放入电泳槽中。（冲洗的话个人感觉可以使用5ml 的针筒，当然操作不能太粗暴了）
6. 测完蛋白含量后，计算含20-50μg 蛋白（根据自己的实验需要进行选择，没有固定的量）的溶液体积即为上样量。取出上样样品至200μl的EP 管中，加入5×SDS 上样缓冲液至终浓度为1×。（上样总体积一般不超过15μl，加样孔的最大限度可加20μl 样品）（其实大一点的垂直电泳槽每孔最大上样量可以达到40μl，胶做得很好的话50μl也是问题不大的）上样前要将样品于沸水中煮5~10min 使蛋白变性。（本人心得：可以使用PCR 仪进行变性，加快速度，这样就不用将水煮沸了，同时在水中煮蛋白样品有下面弊端：1.EP管容易炸开，样品丢失；2.容易进水，使样品体积增加，超过电泳最大上样量）
7. 加足够的电泳液后开始准备上样。（电泳液至少要漫过内测的小玻璃板）用微量进样器贴壁吸取样品，将样品吸出不要吸进气泡。将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样品。（加样太快可使样品冲出加样孔，若有气泡也可能使样品溢出。加入下一个样品时，进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤数次，以免交叉污染）
（3）电泳：
电泳时间一般 4~5 h，电压为40V 较好，也可用60V。（本人为了加快速度，浓缩胶时用80-100V 跑，到分离胶以后用 150-200跑，结果也不错，总时间 2h 左右）电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳，进行转
膜（如果目的条带比较大的话，最好使用可视的蛋白marker，Fermentas 的0441 和0671比较好，就是有点贵。一般要让目的条带跑过分离胶的1/3 比较好，不要局限于此说明）。 （四）转膜
（1）转一张膜需准备6 张7.0~8.3cm 的滤纸和1 张7.3~8.6cm 的PVDF膜。切滤纸和膜时一定要戴手套，因为手上的蛋白会污染膜。将切好的PVDF膜置于水上浸2 h 才可使用。（用镊子捏住膜的一边轻轻置于有超纯水的平皿里，要使膜浮于水上，只有下层才与水接触。这样由于毛细管作用可使整个膜浸湿。若膜沉入水里，膜与水之间形成一层空气膜，这样会阻止膜吸水）（个人感觉其实转膜之前浸湿一下就ok 了，没有多大问题，可能按照上述操作结果会更好）
（2）在加有转移液的搪瓷盘里放入转膜用的夹子、两块海绵垫、一支玻棒、滤纸和浸过的膜。
（3）将夹子打开使黑的一面保持水平。在上面垫一张海绵垫，用玻棒来回擀几遍以擀走里面的气泡。（一手擀另一手要压住垫子使其不能随便移动）在垫子上垫三层滤纸（可三张纸先叠在一起再垫于垫子上，注：个人感觉就垫1 张滤纸也没问题呀），一手固定滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。
（4）要先将玻璃板撬掉才可剥胶，撬的时候动作要轻，要在两个边上轻轻的反复撬（应该边撬边用流水缓缓冲洗）。撬一会儿玻璃板便开始松动，直到撬去玻板。（撬时一定要小心，胶很易裂，要用巧劲）除去小玻璃板后，将浓缩胶轻轻刮去（浓缩胶影响操作），要避免把分离胶刮破。小心剥下分离胶盖于滤纸上，用手调整使其与滤纸对齐，轻轻用玻棒擀去气泡。将膜盖于胶上，要盖满整个胶（膜盖下后不可再移动）并除气泡。在膜上盖3 张滤纸并除去气泡。最后盖上另一个海绵垫，擀几下就可合起夹子。整个操作在转移液中进行，要不断的擀去气泡。膜两边的滤纸不能相互接触，接触后会发生短路。（转移液含甲醇，操作时要戴手套，实验室要开门以使空气流通）（最后做成的“三明治”千万不能形成短路，不然有可能会短路烧坏转膜装置（价格不菲，尤其是进口的），第一次做的应请老手指教）
（5）将夹子放入转移槽槽中，要使夹的黑面对槽的黑面，夹的白面对槽的红面。电转移时会产热，在槽的一边放一块冰来降温。一般用60V 转移2 h 或40V 转移3 h。（1.实际上应该根据蛋白分子量的大小确定转膜时间，对于小分子量的蛋白，转膜时最好垫两块PVDF膜，以免转膜过头，因为如果第一张膜上蛋白质已经转过了，第二张膜上还有蛋白质可以进行检测；对于大分子量的蛋白，转膜时电压要高一点，一般80-100V，时间也要延长一点，开始最好也用两块膜， 特别是务必注意加强降温措施。当然转膜是要摸条件的，最好刚开始做的时候摸个转膜的时间梯度。如果由于时间原因来不及做下面实验，可以在4 度下12V 转膜过夜）（2.PVDF膜建议使用0.22μm 的小孔径膜，不容易转膜过头）（3.不同的转膜装置，转移效率是不一样的，所以换用转膜装置，最好再摸个条件）（4. 转膜时电极方向注意是膜正胶负） （6）转完后将膜用1×丽春红染液染5min（于脱色摇床上摇）。然后用水冲洗掉没染上的染液就可看到膜上的蛋白。将膜晾干备用。（一般不需要做这步）
（五）免疫反应（个人建议：还是使用杂交袋进行一抗和二抗的孵育，节约抗体）
（1）将膜用TBS 从下向上浸湿后，移至含有封闭液的平皿中，室温下脱色摇床上摇 动封闭 1h。 （2）将一抗用TBST 稀释至适当浓度（在1.5ml 离心管中）；撕下适当大小的一块儿保鲜膜铺于实验台面上，四角用水浸湿以使保鲜膜保持平整；将抗体溶液加到保鲜膜上；从封闭液中取出膜，用滤纸吸去残留液后，将膜蛋白面朝下放于抗体液面上，掀动膜四角以赶出残留气泡；室温下孵育1~2h 后，用TBST在室温下脱色摇床上洗两次，每次10min；再用TBS 洗一次，10min。
（3）同上方法准备二抗稀释液并与膜接触，室温下孵育1~2h 后，用TBST在室温下脱色摇床上洗两次，每次 10min；再用TBS 洗一次，10min，进行化学发光反应。 （六）化学发光，显影，定影
（1）将A 和B 两种试剂在保鲜膜上等体积混合；1min 后，将膜蛋白面朝下与此混合液充分接触；1min 后，将膜移至另一保鲜膜上，去尽残液，包好，放入X-光片夹中。 （2）在暗室中，将1×显影液和定影液分别到入塑料盘中；在红灯下取出X-片， 用切纸刀剪裁适当大小（比膜的长和宽均需大1cm）；打开X-光片夹，把X-光片放在膜上，一旦放上，便不能移动，关上X-光片夹，开始计时；根据信号的强弱适当调整曝光时间，一般为1min 或 5min，也可选择不同时间多次压