1 目的:检验DNA质粒大小或者降解情况。 2 范围:适用于DNA质粒性状初步判断。 3 责任:检验员对本规程的实施负责. 4 内容:
4.1 4.2
仪器装置: DYCP-31E琼脂糖水平电泳仪,微量移液器,水平电泳槽 试剂:1.电泳缓冲液（TAE）
40 mmol/L Tris-乙酸 1 mol/L EDTA
(配制方法：24.2克Tris碱，5.71ml冰乙酸，10ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)，定容至5000ml）
2. λDNA/HindIII分子量标准(marker,-20℃保存) 3．Goldview—核酸染料 （配置marker 用得上）
4. 1%琼脂糖凝胶溶液
（配制方法：称取琼脂糖1克，加入100ml TAE电泳缓冲液）
4.3
制作过程:
1． 2．
将100ml的1%琼脂糖凝胶溶液，100℃水浴加热至琼脂糖融化均匀。 取电泳槽内的有机玻璃内槽(制胶槽)洗干净,晾干,放入制胶玻璃板.
取透明胶带将玻璃板与内槽两端边缘封好,形成模子.将内槽置于水平位置,并在固定位置放好梳子待琼脂糖凝胶冷却至60℃左右时，加入5μL Goldview，摇匀，轻轻倒入电泳胶模中，琼脂糖凝胶的厚度在3～5mm。倒胶时要避免产生气泡，若有气泡可用吸管小心吸去。
3．
琼脂糖凝胶凝固后，在室温放置20分钟，小心拔掉点样梳子保持点
样孔的完好。
4．
取下胶带,将凝胶及内槽放入电泳槽中.添加1×TAE电泳缓冲液至没
过凝胶2mm.
4.4加样:在点样板上混合DNA样品和上样缓冲液,上样缓冲液的最终稀释倍数应不小于
1X.用10 ul微量移液器分别将样品加入胶板的样品小槽内,每加完一个样品,应更换一个加样头,以防污染,加样时勿碰坏样品孔周围的凝胶面.(注意:加样前要先记下加样的顺序).
4.5 电泳:加样后的凝胶板立即通电进行电泳,电压60-100V,样品由负极(黑色)向正极(红色)方向移动.电压升高,琼脂糖凝胶的有效分离范围降低.当溴酚蓝移动到距离胶板下沿约1cm处时,停止电泳.
4.6拍照：观察照相:在紫外灯下观察,DNA存在则显示出红色荧光条带,采用凝胶成像系统拍照保存。
5 结果判断
根据marker的大小来初步判断条带的正误，根据条带初步判定质粒是否降解，或者是否单克隆，或者杂带。