货号：QS2612 规格：50管/24样
α-葡萄糖苷酶（α-Glucosidase,α-GC）试剂盒说明书
可见分光光度法
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
α-GC(EC 3.2.1.20)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，催化水解芳基或烃基与糖基之间的α-糖苷键生成葡萄糖，不仅与细胞壁的松弛或加固有关，而且与细胞识别和一些信号分子产生密切相关。
测定原理：
α-GC分解对-硝基苯-α-D吡喃葡萄糖苷生成对-硝基苯酚，后者在400nm有最大吸收峰，通过测定吸光值升高速率来计算α-GC活性。
自备实验用品及仪器：
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂组成和配制：
提取液：液体50mL×1瓶，4℃保存。
试剂一：粉剂×2瓶，-20℃保存；临用前每瓶加入10mL蒸馏水，充分溶解备用；用不完 的试剂仍-20℃保存。
试剂二：液体25mL×1瓶，4℃保存。 试剂三：液体50mL×1瓶，4℃保存。 粗酶液提取： 1、细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细菌或细胞加入1mL提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；15000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。 2、组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液），进行冰浴匀浆。15000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。 测定步骤：
1、分光光度计预热30min以上，调节波长至400nm，蒸馏水调零。 2、加样表 试剂名称（μL） 测定管 对照管 试剂一 400 蒸馏水 400 试剂二 500 500 样本 100 100 充分混匀，放入37℃准确水浴30min后，立即放入95℃水浴5min（盖紧，以防止水分散失），
流水冷却后充分混匀（以保证浓度不变），8000g，4℃，离心5min，取上清液
上清液 500 500 第1页，共2页
试剂三 1000 1000 充分混匀，室温静置2min后， 400nm处测定吸光值A，计算ΔA=A测定管-A对照管。每个测定管需设一个对照管。
α-GC活力计算：
标准条件下测定的回归方程为y =0.00543x -0.0027；x为标准品浓度（nmol/mL），y为吸光值。
（1）按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每mg组织蛋白每分钟产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。 α-GC活力(nmol/min/mg prot)=[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V反总]÷(V样×Cpr)÷T
=61.39×(ΔA+0.0027) ÷Cpr
需要另外测定，建议使用本公司BCA蛋白质含量测定试剂盒。 （2）按样本鲜重计算：
单位的定义：每g组织每分钟产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。
α-GC活力(nmol/min /g鲜重)＝[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V反总]÷(W×V样÷V样总)÷T
=61.39×(ΔA+0.0027) ÷W
（3）按细菌或细胞密度计算：
单位的定义：每1万个细菌或细胞每分钟产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。 α-GC活力(nmol/min /104 cell)=[(ΔA+0.0027) ÷0.00543×V反总]÷(500×V样÷V样
总)÷T
=0.123×(ΔA +0.0027)
V反总：反应体系总体积，1mL；V样：加入反应体系中样本体积，0.1mL；V样总：加入提取液体积，1mL；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g； 500：细胞或细菌总数，500万；T：反应时间，30min。
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