小麦不同部位蛋白全程研究过程简ä»?/p>
1.1
小麦叶片蛋白质组提取
采用
TCA
/丙酮沉淀一酚/
SDS
联合抽提法来提取小麦叶片蛋白。参ç…?/p>
Wang
ç?/p>
[1]
方法ï¼?/p>
加以改进。取新鲜的小麦叶ç‰?/p>
1g
,液氮中迅速研磨成细粉,加å…?/p>
10mI
于一
20
℃预冷的提取
介质
[10 TCA(w
ï¼?/p>
V)
丙酮溶液
+0
ï¼?/p>
2 DTT]
ï¼?/p>
反复颠倒混合,
一
20
â„?/p>
沉淀
2 h
或过夜;
4
â„?/p>
ï¼?/p>
16 000
×
g
离心
10 min
,弃上清;沉淀用含
100mmol
ï¼?/p>
I
醋酸铵的
80
甲醇溶液æ´?/p>
1
次,
80
丙酮æ´?/p>
1
次,
通风橱内室温干燥
10 min
ï¼?/p>
加入
10mI
酚/
SDS
抽提å¤?/p>
[-pH 8
ï¼?/p>
0 Tris
饱和酚与
SDS
缓冲æ¶?/p>
(30
蔗糖ã€?/p>
2 SDS
�/p>
5 J3
一巯基乙醇ã€?/p>
0
ï¼?/p>
1mol
ï¼?/p>
[ pH 8
ï¼?/p>
0 Tris
�/p>
Hc1)1
ï¼?/p>
1}
昆合
]
振荡混匀温育
5 min
ï¼?/p>
4
â„?/p>
ï¼?/p>
16 000
×
g
离心
10 min
ï¼?/p>
转移上层酚相至一干净新管中,
加入
5
倍体积的冷的å�?/p>
100mmol
ï¼?/p>
I
醋酸铵的甲醇溶液,一
20
â„?/p>
沉淀
4 h
或过夜;
4
â„?/p>
ï¼?/p>
16 000
×
g
离心
lOmin
,弃上清液,
沉淀用甲醇洗
1
次,
80
丙酮æ´?/p>
1
次,通风橱内自然风干,~
80
â„?/p>
冰箱保存备用ã€?/p>
1.2
小麦胚乳蛋白的提å�?/p>
èµ?/p>
[2]
选用
TCA-
丙酮法,抽穗时选取同一天抽穗挂牌标记,抽穗å�?/p>
10 d
取挂牌标记的
5
�/p>
穗,取穗中上部灌浆一致的籽粒,剥去颖壳置于冻存管ä¸?/p>
-80
℃保存。取冻存籽粒
20
粒,ç”?/p>
灭菌预冷的剪刀和镊子在预冷的研钵中迅速剥去种皮,
切去胚,
�/p>
0.2% PVP
迅速研磨至糊状ï¼?/p>
悬浮于含
0.07% DTT
的预å†?/p>
10%TCA-
丙酮ï¼?/p>
-20
℃过夜ã€?/p>
次日
4
â„?/p>
35 000 r
·
min-1
离心
15 min
ï¼?/p>
弃上清,
将沉淀重悬äº?/p>
80%
丙酮,于
-20
℃温æµ?/p>
l h
ï¼?/p>
4
â„?/p>
16 000 r
·
min-1
离心
15 min
。沉淀
重悬äº?/p>
100%
丙酮,于
-20
℃温æµ?/p>
l h
ï¼?/p>
4
â„?/p>
16 000 r
·
min-1
离心
15 min
。重复此步骤
2~4
次,
倒出上清液,离心管置于冰浴中抽真ç©?/p>
15 min
至丙酮完全挥发,得到的蛋白为粗蛋白ã€?/p>
1.
双向电泳技æœ?/p>
1.1
小麦叶片蛋白质组双向电泳技æœ?/p>
参照æ�?/p>
[3]
采用
SDS
�/p>
PAGE
和双向凝胶电æ³?/p>
30 mg
蛋白粉加å…?/p>
300 FI
水化上样缓冲æ¶?/p>
(8mol
ï¼?/p>
I
尿素ã€?/p>
4 CHAPS
�/p>
65 mmol
ï¼?/p>
I DTT
�/p>
0
ï¼?/p>
2V
ï¼?/p>
V BioIyte)
ï¼?/p>
37
℃水æµ?/p>
30 min
ï¼?/p>
6
â„?/p>
ï¼?/p>
40 000
×
g
离心
30 rain
ï¼?/p>
取上清液ï¼?/p>
Bradford
法测定蛋白浓åº?/p>
�/p>
SDS
�/p>
PAGE
电泳上样量为
100 mg
,蛋
白样品与
2
×电泳上样缓冲液等体积混合ï¼?/p>
直接åœ?/p>
12
的聚丙烯酰胺凝胶中电泳,
胶体考染å�?/p>
ï¼?/p>
用普通凝胶成像系ç»?/p>
(Bio
�/p>
Rad
ï¼?/p>
美国
)
采集图像ã€?/p>
双向电泳采用
BioRad
公司电泳系统
(Protean
IEF cell
等电聚焦系统ã€?/p>
PR()TEAN 11 xi Cell
垂直电泳系统ã€?/p>
Mini pro
�/p>
tean
â…?/p>
cell
垂直电泳系统
)
ï¼?/p>
蛋白上样量为ï¼?/p>
7 cm
胶条
200 Fg
�/p>
17 cm
胶条
5OO Fg
。等电聚焦和向第二向
SDS
�/p>
PAGE
的转ç§?/p>
参照
Bio
�/p>
Rad
操作指南进行ã€?/p>
IPG
胶条ä¸?/p>
7
�/p>
17 cm(pH
�/p>
3
ï½?/p>
10
�/p>
4
ï½?/p>
7
ï¼?/p>
Bio
�/p>
Rad)
,第二向è�?/p>
丙烯酰胺凝胶电泳胶浓度为
12
�/p>
染色采用胶体考马斯亮蓝染色方æ³?/p>
l1
�/p>
UMAX Power
�/p>
I
ï¼?/p>
ook
2100XI
型光密度扫描ä»?/p>
(Bio
�/p>
Rad
,美å›?/p>
)
,分辨率设为
300dpi
采集图像。每种蛋白提取方æ³?/p>
的双向电泳进è¡?/p>
3
次重复ã€?/p>
PDQuest 7
ï¼?/p>
4
软件
(BioRad
,美å›?/p>
)
对图像进行分析ã€?/p>
2.2
小麦胚乳蛋白的双向电æ³?/p>
对小麦胚乳采用以下技术进行电泳如èµ?/p>
[4].
样品被动上样及等电聚ç„?/p>
,
选用
17 cm IPG
胶条ï¼?/p>
pH 4~7
ï¼?/p>
�/p>
IPG
干胶条胶面朝下放入水化液的水代盘中,覆盖一层矿物油以防止等电聚
焦时尿素析出,蛋白氧化及产生冷凝水,被动水化
14 h
后,置于
Bio-Rad
等电聚焦仪中,等
电聚焦在
20
℃条件下自动进行,每胶条限流
50
μ
A
。等电聚焦参数如下:â‘?/p>
500 V 4 h
é™?/p>
盐;â‘?/p>
1 000 V 1 h
线性上升(
Gra
ï¼?/p>
;③
8 000 V 2.5 h
线性上升(
Gra
ï¼?/p>
;④
8 000 V 0.5 h
�/p>
焦ã€?/p>
胶条的平è¡?/p>
,
将等电聚胶后的胶条胶面向上置äº?/p>
5 mL
平衡缓冲液Ⅰ
ï¼?/p>
50 mol
·
L-1 Tris-HCL
ï¼?/p>
pH 8.8
ï¼?/p>
6 mol
·
L-1urea
ï¼?/p>
30%
甘油ï¼?/p>
2% SDS
ï¼?/p>
0.002%
溴酚蓝,
1%DTT
)中平衡摇床震荡
15 min
,然后再置于
5 mL
平衡缓冲液Ⅱï¼?/p>
50 mmol
·
L-1 Tris-HCL
ï¼?/p>
pH 8.8
ï¼?/p>
6 mol
·
L-urea
ï¼?/p>
30%
甘油ï¼?/p>
2% SDS
ï¼?/p>
0.002%
溴酚蓝,
2.5%
碘乙酰胺)中平衡
15 min
,取出后放在湿润的定性滤
纸上,以吸去表面多余的液体ã€?/p>
SDS-PAGE,
采用
Bio-Rad
垂直电泳系统ï¼?/p>
胶的浓度ä¸?/p>
12%
ï¼?