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人参茎段组织培养研究

 

摘要

 

 

 

 

?/p>

MS

为基本培养基,附加不同浓度的

2

?/p>

4-D

?/p>

NAA

?/p>

6-BA

,研

究不同激素水平对人参茎段诱导不定芽的影响。结果表明:

MS

培养?/p>

+2

?/p>

4-D 

0.1mg/L+NAA 0.1mg/L+6-BA 0.5 mg/L

诱导效果最好,出芽率可?/p>

100%

。不?/p>

芽在适宜培养基上能快速增殖?/p>

带腋芽茎段在培养过程中可产生丛生芽,

经继?/p>

培养可大量增殖。小苗在

1/2 

MS

培养基中容易生根,健壮小苗经驯化后移栽,

成活率可?/p>

100%

,建立了人参的快繁体系?/p>

 

关键?/p>

 

 

 

 

人参;幼芽;组织培养;快速繁?/p>

 

人参具有重要的医疗保健价值和巨大的经济效益,

自古以来就被人们枧为?/p>

品。但是人参自然生长缓慢,发育期长?/p>

5

?/p>

7

年,对生长环境要求严格,对培

育新品种和大量生产造成很大的困?/p>

[1-3]

?/p>

?/p>

20

世纪

60

年代以来?/p>

人参组织?/p>

养技术得到深入的研究和应用?/p>

研究人员希望通过植物组培等新技术,

在人工控

制条件下大量繁殖人参有效的组织或细胞,使人参生产摆脱自然环境条件的限

制,

同时达到快速培育新品种的目?/p>

[4-5]

?/p>

该文通过人参茎段快速诱导不定芽?/p>

方法,大量繁殖人参幼苗,以为快速获得人参无菌苗开辟新途径?/p>

 

1 

 

 

 

材料与方?/p>

 

1.1 

 

 

 

试验材料

 

取人参幼茎若干,经自来水冲洗

5

?/p>

6

次,放在吸水纸上将其晾干。接着?/p>

刀片将幼茎切成

1 cm

的小段,经过一段时间培养后形成不定芽?/p>

 

1.2 

 

 

 

试验方法

 

1.2.1 

 

 

 

外植体消毒?/p>

取人参外植体的幼茎,

将处理晾干后的材料转入高?/p>

消毒的烧杯中?/p>

在超净工作台上先用

75%

酒精浸泡杀?/p>

30 s

?/p>

去除酒精后用无菌

水漂?/p>

3

?/p>

4

次,之后迅速加?/p>

0.1%

升汞液浸泡杀?/p>

8

?/p>

10 

min

,浸泡过程中?/p>

常摇动烧杯。倒掉升汞液,用无菌水冲洗

4

?/p>

5

次,最后用无菌水浸泡备?/p>

[6]

?/p>

 

1.2.2 

 

 

 

初代培养。将消毒后的人参幼茎切成若干

1 

cm

的小茎段,接种于

诱导不定芽培养基。设?/p>

3

种培养基配比关系?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.1 

mg/L+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.2 mg/L+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.3 mg/L+NAA 1.0 mg/L+6-BA 2.0 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

。培养温度为

23

?/p>

27 

℃,湿度

30%

,光照强?/p>

2 

000 

lx

,光照时?/p>

?/p>

14 h/d

,培养数天后观察其变化?/p>

 

1.2.3 

 

 

 

继代培养?/p>

切取诱导形成的不定芽转移至不定芽扩繁培养基,

采用

MS+3%

蔗糖

+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+

琼脂

0.75%

进行扩繁?/p>

15

?/p>

20 d

分离

诱导的丛生芽?/p>

在生根培养基转接生长健壮?/p>

长势良好的人参小苗,

其余的单?/p>

再进行继代培?/p>

[7]

?/p>

 

1.2.4 

 

 

生根培养。在生根培养?/p>

1/2MS+NAA 1.0 mg/L

上培养高

2

?/p>

3 cm

?/p>

2

?/p>

3

片叶的单株幼苗。培养条件:温度?/p>

25±

2

)℃,光?/p>

2 000 lx

,光照时?/p>

12 

h/d

?/p>

 

2 

 

 

 

结果与分?/p>

 

2.1 

 

 

 

人参茎段诱导培养

 

采取

3

种激素配比培养基对人参茎段进行诱导不定芽,结果表明:

MS

培养

?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.1 mg/L+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+

琼脂

0.75%

诱导效果

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人参茎段组织培养研究

 

摘要

 

 

 

 

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MS

为基本培养基,附加不同浓度的

2

?/p>

4-D

?/p>

NAA

?/p>

6-BA

,研

究不同激素水平对人参茎段诱导不定芽的影响。结果表明:

MS

培养?/p>

+2

?/p>

4-D 

0.1mg/L+NAA 0.1mg/L+6-BA 0.5 mg/L

诱导效果最好,出芽率可?/p>

100%

。不?/p>

芽在适宜培养基上能快速增殖?/p>

带腋芽茎段在培养过程中可产生丛生芽,

经继?/p>

培养可大量增殖。小苗在

1/2 

MS

培养基中容易生根,健壮小苗经驯化后移栽,

成活率可?/p>

100%

,建立了人参的快繁体系?/p>

 

关键?/p>

 

 

 

 

人参;幼芽;组织培养;快速繁?/p>

 

人参具有重要的医疗保健价值和巨大的经济效益,

自古以来就被人们枧为?/p>

品。但是人参自然生长缓慢,发育期长?/p>

5

?/p>

7

年,对生长环境要求严格,对培

育新品种和大量生产造成很大的困?/p>

[1-3]

?/p>

?/p>

20

世纪

60

年代以来?/p>

人参组织?/p>

养技术得到深入的研究和应用?/p>

研究人员希望通过植物组培等新技术,

在人工控

制条件下大量繁殖人参有效的组织或细胞,使人参生产摆脱自然环境条件的限

制,

同时达到快速培育新品种的目?/p>

[4-5]

?/p>

该文通过人参茎段快速诱导不定芽?/p>

方法,大量繁殖人参幼苗,以为快速获得人参无菌苗开辟新途径?/p>

 

1 

 

 

 

材料与方?/p>

 

1.1 

 

 

 

试验材料

 

取人参幼茎若干,经自来水冲洗

5

?/p>

6

次,放在吸水纸上将其晾干。接着?/p>

刀片将幼茎切成

1 cm

的小段,经过一段时间培养后形成不定芽?/p>

 

1.2 

 

 

 

试验方法

 

1.2.1 

 

 

 

外植体消毒?/p>

取人参外植体的幼茎,

将处理晾干后的材料转入高?/p>

消毒的烧杯中?/p>

在超净工作台上先用

75%

酒精浸泡杀?/p>

30 s

?/p>

去除酒精后用无菌

水漂?/p>

3

?/p>

4

次,之后迅速加?/p>

0.1%

升汞液浸泡杀?/p>

8

?/p>

10 

min

,浸泡过程中?/p>

常摇动烧杯。倒掉升汞液,用无菌水冲洗

4

?/p>

5

次,最后用无菌水浸泡备?/p>

[6]

?/p>

 

1.2.2 

 

 

 

初代培养。将消毒后的人参幼茎切成若干

1 

cm

的小茎段,接种于

诱导不定芽培养基。设?/p>

3

种培养基配比关系?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.1 

mg/L+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.2 mg/L+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.3 mg/L+NAA 1.0 mg/L+6-BA 2.0 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

。培养温度为

23

?/p>

27 

℃,湿度

30%

,光照强?/p>

2 

000 

lx

,光照时?/p>

?/p>

14 h/d

,培养数天后观察其变化?/p>

 

1.2.3 

 

 

 

继代培养?/p>

切取诱导形成的不定芽转移至不定芽扩繁培养基,

采用

MS+3%

蔗糖

+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+

琼脂

0.75%

进行扩繁?/p>

15

?/p>

20 d

分离

诱导的丛生芽?/p>

在生根培养基转接生长健壮?/p>

长势良好的人参小苗,

其余的单?/p>

再进行继代培?/p>

[7]

?/p>

 

1.2.4 

 

 

生根培养。在生根培养?/p>

1/2MS+NAA 1.0 mg/L

上培养高

2

?/p>

3 cm

?/p>

2

?/p>

3

片叶的单株幼苗。培养条件:温度?/p>

25±

2

)℃,光?/p>

2 000 lx

,光照时?/p>

12 

h/d

?/p>

 

2 

 

 

 

结果与分?/p>

 

2.1 

 

 

 

人参茎段诱导培养

 

采取

3

种激素配比培养基对人参茎段进行诱导不定芽,结果表明:

MS

培养

?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.1 mg/L+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+

琼脂

0.75%

诱导效果

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人参茎段组织培养研究

 

摘要

 

 

 

 

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MS

为基本培养基,附加不同浓度的

2

?/p>

4-D

?/p>

NAA

?/p>

6-BA

,研

究不同激素水平对人参茎段诱导不定芽的影响。结果表明:

MS

培养?/p>

+2

?/p>

4-D 

0.1mg/L+NAA 0.1mg/L+6-BA 0.5 mg/L

诱导效果最好,出芽率可?/p>

100%

。不?/p>

芽在适宜培养基上能快速增殖?/p>

带腋芽茎段在培养过程中可产生丛生芽,

经继?/p>

培养可大量增殖。小苗在

1/2 

MS

培养基中容易生根,健壮小苗经驯化后移栽,

成活率可?/p>

100%

,建立了人参的快繁体系?/p>

 

关键?/p>

 

 

 

 

人参;幼芽;组织培养;快速繁?/p>

 

人参具有重要的医疗保健价值和巨大的经济效益,

自古以来就被人们枧为?/p>

品。但是人参自然生长缓慢,发育期长?/p>

5

?/p>

7

年,对生长环境要求严格,对培

育新品种和大量生产造成很大的困?/p>

[1-3]

?/p>

?/p>

20

世纪

60

年代以来?/p>

人参组织?/p>

养技术得到深入的研究和应用?/p>

研究人员希望通过植物组培等新技术,

在人工控

制条件下大量繁殖人参有效的组织或细胞,使人参生产摆脱自然环境条件的限

制,

同时达到快速培育新品种的目?/p>

[4-5]

?/p>

该文通过人参茎段快速诱导不定芽?/p>

方法,大量繁殖人参幼苗,以为快速获得人参无菌苗开辟新途径?/p>

 

1 

 

 

 

材料与方?/p>

 

1.1 

 

 

 

试验材料

 

取人参幼茎若干,经自来水冲洗

5

?/p>

6

次,放在吸水纸上将其晾干。接着?/p>

刀片将幼茎切成

1 cm

的小段,经过一段时间培养后形成不定芽?/p>

 

1.2 

 

 

 

试验方法

 

1.2.1 

 

 

 

外植体消毒?/p>

取人参外植体的幼茎,

将处理晾干后的材料转入高?/p>

消毒的烧杯中?/p>

在超净工作台上先用

75%

酒精浸泡杀?/p>

30 s

?/p>

去除酒精后用无菌

水漂?/p>

3

?/p>

4

次,之后迅速加?/p>

0.1%

升汞液浸泡杀?/p>

8

?/p>

10 

min

,浸泡过程中?/p>

常摇动烧杯。倒掉升汞液,用无菌水冲洗

4

?/p>

5

次,最后用无菌水浸泡备?/p>

[6]

?/p>

 

1.2.2 

 

 

 

初代培养。将消毒后的人参幼茎切成若干

1 

cm

的小茎段,接种于

诱导不定芽培养基。设?/p>

3

种培养基配比关系?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.1 

mg/L+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.2 mg/L+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.3 mg/L+NAA 1.0 mg/L+6-BA 2.0 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

。培养温度为

23

?/p>

27 

℃,湿度

30%

,光照强?/p>

2 

000 

lx

,光照时?/p>

?/p>

14 h/d

,培养数天后观察其变化?/p>

 

1.2.3 

 

 

 

继代培养?/p>

切取诱导形成的不定芽转移至不定芽扩繁培养基,

采用

MS+3%

蔗糖

+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+

琼脂

0.75%

进行扩繁?/p>

15

?/p>

20 d

分离

诱导的丛生芽?/p>

在生根培养基转接生长健壮?/p>

长势良好的人参小苗,

其余的单?/p>

再进行继代培?/p>

[7]

?/p>

 

1.2.4 

 

 

生根培养。在生根培养?/p>

1/2MS+NAA 1.0 mg/L

上培养高

2

?/p>

3 cm

?/p>

2

?/p>

3

片叶的单株幼苗。培养条件:温度?/p>

25±

2

)℃,光?/p>

2 000 lx

,光照时?/p>

12 

h/d

?/p>

 

2 

 

 

 

结果与分?/p>

 

2.1 

 

 

 

人参茎段诱导培养

 

采取

3

种激素配比培养基对人参茎段进行诱导不定芽,结果表明:

MS

培养

?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.1 mg/L+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+

琼脂

0.75%

诱导效果

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人参茎段组织培养研究

 

摘要

 

 

 

 

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MS

为基本培养基,附加不同浓度的

2

?/p>

4-D

?/p>

NAA

?/p>

6-BA

,研

究不同激素水平对人参茎段诱导不定芽的影响。结果表明:

MS

培养?/p>

+2

?/p>

4-D 

0.1mg/L+NAA 0.1mg/L+6-BA 0.5 mg/L

诱导效果最好,出芽率可?/p>

100%

。不?/p>

芽在适宜培养基上能快速增殖?/p>

带腋芽茎段在培养过程中可产生丛生芽,

经继?/p>

培养可大量增殖。小苗在

1/2 

MS

培养基中容易生根,健壮小苗经驯化后移栽,

成活率可?/p>

100%

,建立了人参的快繁体系?/p>

 

关键?/p>

 

 

 

 

人参;幼芽;组织培养;快速繁?/p>

 

人参具有重要的医疗保健价值和巨大的经济效益,

自古以来就被人们枧为?/p>

品。但是人参自然生长缓慢,发育期长?/p>

5

?/p>

7

年,对生长环境要求严格,对培

育新品种和大量生产造成很大的困?/p>

[1-3]

?/p>

?/p>

20

世纪

60

年代以来?/p>

人参组织?/p>

养技术得到深入的研究和应用?/p>

研究人员希望通过植物组培等新技术,

在人工控

制条件下大量繁殖人参有效的组织或细胞,使人参生产摆脱自然环境条件的限

制,

同时达到快速培育新品种的目?/p>

[4-5]

?/p>

该文通过人参茎段快速诱导不定芽?/p>

方法,大量繁殖人参幼苗,以为快速获得人参无菌苗开辟新途径?/p>

 

1 

 

 

 

材料与方?/p>

 

1.1 

 

 

 

试验材料

 

取人参幼茎若干,经自来水冲洗

5

?/p>

6

次,放在吸水纸上将其晾干。接着?/p>

刀片将幼茎切成

1 cm

的小段,经过一段时间培养后形成不定芽?/p>

 

1.2 

 

 

 

试验方法

 

1.2.1 

 

 

 

外植体消毒?/p>

取人参外植体的幼茎,

将处理晾干后的材料转入高?/p>

消毒的烧杯中?/p>

在超净工作台上先用

75%

酒精浸泡杀?/p>

30 s

?/p>

去除酒精后用无菌

水漂?/p>

3

?/p>

4

次,之后迅速加?/p>

0.1%

升汞液浸泡杀?/p>

8

?/p>

10 

min

,浸泡过程中?/p>

常摇动烧杯。倒掉升汞液,用无菌水冲洗

4

?/p>

5

次,最后用无菌水浸泡备?/p>

[6]

?/p>

 

1.2.2 

 

 

 

初代培养。将消毒后的人参幼茎切成若干

1 

cm

的小茎段,接种于

诱导不定芽培养基。设?/p>

3

种培养基配比关系?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.1 

mg/L+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.2 mg/L+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

?/p>

MS

培养?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.3 mg/L+NAA 1.0 mg/L+6-BA 2.0 mg/L+

琼脂

0.75%

?/p>

pH

值为

5.8

。培养温度为

23

?/p>

27 

℃,湿度

30%

,光照强?/p>

2 

000 

lx

,光照时?/p>

?/p>

14 h/d

,培养数天后观察其变化?/p>

 

1.2.3 

 

 

 

继代培养?/p>

切取诱导形成的不定芽转移至不定芽扩繁培养基,

采用

MS+3%

蔗糖

+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+

琼脂

0.75%

进行扩繁?/p>

15

?/p>

20 d

分离

诱导的丛生芽?/p>

在生根培养基转接生长健壮?/p>

长势良好的人参小苗,

其余的单?/p>

再进行继代培?/p>

[7]

?/p>

 

1.2.4 

 

 

生根培养。在生根培养?/p>

1/2MS+NAA 1.0 mg/L

上培养高

2

?/p>

3 cm

?/p>

2

?/p>

3

片叶的单株幼苗。培养条件:温度?/p>

25±

2

)℃,光?/p>

2 000 lx

,光照时?/p>

12 

h/d

?/p>

 

2 

 

 

 

结果与分?/p>

 

2.1 

 

 

 

人参茎段诱导培养

 

采取

3

种激素配比培养基对人参茎段进行诱导不定芽,结果表明:

MS

培养

?/p>

+3%

蔗糖

+2

?/p>

4-D 0.1 mg/L+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L+

琼脂

0.75%

诱导效果



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